Capítulo 9 |
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Producción de penicilina | Cepas, medios de mantenimiento e inóculos | Requerimientos nutricionales y específicos | Parámetros de producción | Tecnología del proceso | Economía del proceso | Lecturas recomendadas
PRODUCCION DE PENICILINA
IntroducciónLos antibióticos son por definición moléculas con actividad antimicrobiana, que incluyen una gran cantidad de compuestos pertenecientes a diferentes familias químicas. Son metabolitos secundarios, producidos en la mayoría de los casos después de la fase de crecimiento. Los primeros procesos para la producción de penicilina, que fue el primer antibiótico conocido, implicaban el crecimiento de Penicillium notatum sobre la superficie de un medio líquido (Czapek-Dox-glucosa). El período de incubación era usualmente de 6-12 días y posteriormente la penicilina se extraía con solventes previa separación del micelio. La historia de las innovaciones en la producción de penicilina comenzó en 1945 con el descubrimiento de una nueva especie, P. chrysogenum, la cual permitió incrementar los rendimientos del producto y trabajar en cultivo sumergido empleando lactosa como fuente de carbono y energía, y agua de macerado de maíz (corn-steep liquor) como fuente de nitrógeno. De esta época es también el hallazgo de que precursores tales como el fenilacetato incrementan los rendimientos del antibiótico, produciéndose en este caso predominantemente penicilina G en lugar de una mezcla de distintos tipos. En la Figura 23 se muestra un esquema de la biosíntesis de penicilina. Las distintas penicilinas son producidas a partir de P. chrysogenum por adición de una apropiada cadena carboxílica en cantidad adecuada en el medio de cultivo, pero solamente tienen valor terapéutico la penicilina G y la V. Ambas tienen un espectro y actividad similar, pero la penicilina V es más estable a pH ácido, lo que permite su administración por vía oral. La producción de penicilina como otros procesos biotecnológicos está dominada por su aspecto competitivo entre los grandes laboratorios productores, que realizan permanentes esfuerzos de mejoramiento en cada área del proceso: cepa, fermentación y separación. El proceso a grandes rasgos implica el cultivo de P. chrysogenum en reactores de volumen creciente hasta una escala de 500.000 l, separación del micelio por filtración y extracción del antibiótico del caldo, seguida por la cristalización o precipitación ácida del mismo. Cepas, medios de mantenimiento e inóculos
Normalmente la cepa de producción es mantenida como esporos, liofilizados o en nitrógeno líquido. Otra alternativa es mantener el desarrollo vegetativo en N2 líquido o congelado a -70 °C. Antes de comenzar un proceso a partir de un cultivo, el operador debe realizar una exhaustiva evaluación que asegure el mantenimiento de las características de la cepa, lo cual implica determinar el grado de esporulación, la productividad y características morfológicas, lo que incluye ensayos en agitadores y en fermentadores de laboratorio. Muchos son los factores que se asocian en la síntesis de antibióticos, tales como esporulación, velocidad de crecimiento y niveles de intermediarios, todos los
cuales son regulados de una manera compleja por muchos genes. Esto puede. ser el motivo por el cual las mutaciones con agentes físicos (luz UV, rayos X) y químicos, han tenido un gran éxito en el mejoramiento de cepas. Entre 1950 y 1980 la concentración de penicilina obtenida fue incrementada desde 1000 U ml-1 a cerca de 60.000 - U ml-1 (0.5 a 35 mg ml-1 ). Este mejoramiento fue posible no solamente por modificaciones en la cepa, sino también por la tecnología del proceso, como la ingeniería de aireación y sistema de mezclado en fermentadores, alimentación continua de glucosa, empleo de electrodos de pH para el control del mismo, y utilización del sistema continuo. Las técnicas genéticas se han utilizado de dos formas para el mejoramiento del proceso. En primer lugar el empleo de mutantes bloqueados ha permitido el conocimiento de las rutas biosintéticas y de apropiadas ténicas de selección. En segundo lugar, las técnicas de fusión de protoplastos y procesos parasexuales facilitaron la obtención de recombinantes con rendimientos superiores a los de las cepas originales y con expresiones estables. Además esto permitió la obtención de organismos productores de nuevos antibióticos. El empleo de técnicas de mejoramiento genético posibilitó entonces el aumento de rendimientos y la obtención de nuevas cepas que no producen pigmentos, lo cual ha sido de gran importancia en las etapas de extracción y purificación. Otro aspecto importante en el mejoramiento de cepas se refiere a la morfología celular. En este sentido, si bien es conocido que la morfología de un hongo en cultivo sumergido puede ser controlada por el nivel de inóculo y por el medio, es posible influir sobre la misma por alteración del genotipo. Así se han seleccionado cepas de P. chrysogenum, que dan menor viscosidad en los caldos, incrementando la transferencia de oxígeno. Las técnicas de recombinación tienen una cierta ventaja sobre las de mutación y selección, porque en este caso se deben estudiar un menor número de mutantes. Las etapas de desarrollo del inóculo se llevan a cabo a 25 °C en erlenmeyers y fermentadores agitados. Los medios empleados en estas etapas incluyen "corn steep liquor" como fuente de nitrógeno, glucosa o sacarosa 2% (p/v), carbonato de calcio 0.5 - 1% (p/v) como "buffer" y sales inorgánicas. Cuando la fuente de carbono empleada en la escala de producción es la lactosa, se la incluye a menudo en la etapa final con glucosa o sacarosa, de forma de inducir la b-galactosidasa y permitir así una rápida iniciación del proceso en el fermentador de producción. Requerimientos nutricionales y específicos
Además de glucosa y lactosa, Penicillium chrysogenum puede utilizar una gran variedad de fuentes de carbono y energía. Alternativamente se han usado sacarosa, almidón, dextrinas, melaza, aceites vegetales y animales, etanol y glicerol. Un medio de cultivo en sistema batch puede contener entre 30 y 40 g. l-1 de lactosa, en tanto que si se emplea un cultivo con alimentación de fuente de carbono, se puede utilizar glucosa o melaza a una concentración final de 100 g l-1. La principal fuente nitrogenada empleada hasta la década del 70 fue "corn steep liquor" debido a que aumentaba los rendimientos del antibiótico probablemente al suministrar compuestos como aminoácidos, factores de crecimiento, precursores de la cadena lateral, además de elementos trazas. Sin embargo, dada la variabilidad del producto entre distintas partidas, los problemas de suministro, y también debido a la introducción de precursores específicos de la cadena lateral, las industrias buscaron reemplazarlo. Los productos alternativos son la harina de semilla de algodón, extractos y peptonas, y la harina de soja. Sin embargo en algunos casos estos productos son igualmente variables y tanto o más caros. En 1976 se demostró la importancia de un suministro continuo de amonio (por alimentación con (NH4)2SO4 ), que permitiese mantener niveles del mismo de aproximadamente 20 mM. Trabajando en cultivos alimentados y modificando la relación nitrógeno/carbono en la alimentación, se comprobó que cuando el cultivo estaba limitado en nitrógeno cesaba la producción de penicilina, la cual se restablecía al ser la fuente de carbono la limitante. El requerimiento de grandes cantidades de NH4+ podría reflejar su necesidad para la síntesis de glutamato, el cual es requerido para producir valina y cisteína. El azufre se incorpora como (NH4)2SO4 y con la fuente de nitrógeno orgánica (extractos, peptona). El fósforo en forma inorgánica se adiciona como sales de fosfato y se aconseja mantener su concentración entre 250 y 500 mg l-1 con alimen tación continua. Además se debe tener en cuenta que el "corn-steep liquor" es una fuente importante de fósforo. Si se desea obtener un determinado tipo de penicilina, se debe incluir inicialmente, o bien por alimentación en los medios, una cantidad relativamente grande de precursor. El requerimiento teórico de fenilacetato sódico, es 0.47 g g-1 de penicilina G ácida, y de fenoxiacetato de sodio, 0.50 g g-1 de penicilina V ácida. Es aconsejable efectuar una alimentación continua de estos componentes para evitar la toxicidad de los mismos sobre la cepa y la hidroxilación por acción del organismo.
La cantidad de penicilina obtenida en un fermentador (PV) es función de la concentración de células (X), de la velocidad específica de producción de penicilina (qp ), del tiempo de fermentación (t) y del volumen de medio de cultivo (V).
Si la producción se opera en sistema "batch" alimentado el objetivo es obtener tanta biomasa como sea posible (término X de la ecuación 1) la cual debería producir penicilina a una alta velocidad específica (qp en ecuación 1) por el mayor tiempo posible. Se ha observado que el máximo valor de qp es de aproximadamente 15 unidades por mg-1 h-1 , el cual se alcanza al comienzo de la fermentación y luego declina. Por otra parte los productores obtienen alrededor de 60.000 unidades ml -1 en 200 h de proceso, lo que significa una productividad media de 300 unidades ml-1 h-1 . Por lo tanto si la máxima biomasa alcanzada es de 50 mg ml-1 para un qp de 15 unidades mg-1 h-1, la máxima productividad debería ser de 750 unidades ml-1 h-1, lo que indica que el promedio obtenido es menos de la mitad del máximo. Lo expuesto indica la importancia de mantener un qp elevado. En este sentido se ha determinado cómo influye sobre este valor, la velocidad específica de crecimiento. El valor de m para la fase de producción, tiene un límite superior, el cual si es superado, la biomasa requiere un exceso de oxígeno que lleva a una disminución de qp , si existe una limitación del mismo en el reactor. El límite inferior dem para la producción varía con la cepa utilizada. En sistemas de cultivo con alimentación con glucosa, el valor de qp varía linealmente con m hasta una velocidad de alimentación de glucosa cuyo valor oscila alrededor de 0,33 m moles de glucosa (g biomasa)-1 h-1 , el cual corresponde a un m de 0,015 h-1 A mayores valores de velocidad de alimentación m se incrementa linealmente pero qp permanece constante (Figura 25). El valor mínimo de u debajo del cual qp desciende linealmente con m se denomina m crítico (mc ). No se conocen con precisión las causas de esta disminución.
El problema por lo tanto es determinar qué factores de la biomasa o del entorno limitan el valor de qp para tratar de superarlos. Si el oxígeno es el limitante del crecimiento, se demuestra una relación lineal entre el valor de m y la velocidad específica de consumo de oxígeno (qO2). De lo anteriormente expuesto se deduce que durante la fase de producción o crecimiento lento en un sistema de producción industrial "batch" alimentado (la glucosa es el sustrato limitante) se deberán mantener valores adecuados de m y q02 para lograr un qp apropiado. Para la mayoría de las fermentaciones industriales el m de producción es menor de 0.01 h-1 . Se debe cuidar en esta fase no tener un exceso de glucosa debido a que el mismo puede ocasionar una inhibición de la actividad o de la síntesis de enzimas involucradas en la biosíntesis de penicilina. A pesar de que la limitación de hexosa disponible es esencial para el éxito del proceso, el valor de m puede ser controlado por otros nutrientes, habiéndose demostrado que la elección del nutriente limitante (oxígeno, fósforo, sulfato, amonio, magnesio) tiene un efecto marcado sobre el metabolismo energético. La relación entre qp y m podría indicar la necesidad de prolongar un estado fisiológico particular de las células. Se ha comprobado por estudios en cultivo continuo que existe una correlación entre la velocidad específica de crecimiento y la morfología celular, la cual corresponde a un estado fisiológico determinado. Para un valor de p mayor de 0,023 h-1 se observa solamente crecimiento vegetativo, en tanto que debajo de 0,014 h-1 comienza a tener lugar la formación de conidias. Debido a que bajas velocidades de crecimiento son de gran importancia en muchos procesos fermentativos, es una necesidad dilucidar para esos casos que funciones celulares tienen lugar. Luego, se podría estabilizar la función deseada, como producción de penicilina, por períodos prolongados de tiempo. Un valor mínimo de m podría indicar también la necesidad de reemplazar células viejas o alteradas, las cuales han perdido irreversiblemente su capacidad de síntesis de penicilina. La duración de la fermentación de penicilina puede estar limitada por la capacidad de transferencia de oxígeno del reactor. Como ya se indicó, en algún momento la concentración celular puede exceder el suministro de oxígeno necesario para mantener un valor alto de qp y la síntesis disminuye. En algunos procesos la presencia de tóxicos, inhibidores o factores no conocidos pueden causar una disminución en el valor de qp, sobre todo al final de la fase de producción.
La tecnología de producción de penicilina presenta a nivel comercial aspectos particulares que son mantenidos en reserva por los productores, a pesar de que existe abundante bibliografía en el tema. Un esquema del proceso se observa en la Figura 26.
La producción de penicilina G o V es llevada a cabo por fermentación en medios líquidos, empleando reactores cuyo volumen oscila entre 40,000 y 500,000 l. Este proceso es aeróbico y en general se emplea una relación de 0,5 - 1,0 volúmenes de aire (volumen de líquido)-1 min-1 . En una fermentación de penicilina típica, la mayoría de la masa celular es obtenida durante las primeras 40 horas de fermentación, a partir de un inóculo de 10% (v/v) de un cultivo vegetativo de 20 g l-1 . Luego el crecimiento continúa a un valor mínimo de p, el cual se debe regular si se quiere mantener un qp elevado. Durante la fermentación se debe controlar si el suministro de oxígeno es el requerido para mantener el valor deseado de qp. Otro parámetro importante es la temperatura, y en este caso el diseño y operación del reactor es importante por el calor generado por el crecimiento y la agitación. Los agitadores utilizados son en general de tipo turbina. La potencia introducida al cultivo es del orden de 1 - 4 W l -1 . Durante el proceso se controla la temperatura, caudal de aire, velocidad de agitación, pH y velocidad de agregado de nutrientes. La duración de la etapa de producción en el caso de operarse un sistema "batch" alimentado es del orden de las 200 h. Actualmente la extracción con solventes es la base para la separación y purificación de la penicilina. El primer paso consiste en separar el micelio del medio de cultivo empleando un filtro rotatorio a vacío tipo cilíndrico. El filtrado rico en penicilina es luego enfriado en un intercambiador de calor a 0 - 4 °C con el objeto de disminuir la degradación enzimática y química durante las etapas de extracción posteriores. Las penicilinas G y V son ácidos fuertes (pKa entre 2.5 - 3.1). Las formas ácidas son solubles en muchos solventes orgánicos y se pueden extraer con un alto rendimiento en acetato de amilo o de butilo a pH 2.5 - 3.0. La extracción se puede realizar en operaciones continuas, a contracorriente en extractores centrífugos en etapas múltiples, a temperaturas de 0 - 3 °C. Otra posibilidad es el empleo de mezcladores estáticos o decantadores, los cuales tienen en menor costo de inversión. Se debe tener en cuenta que tanto la penicilina G como la V se degradan en medio ácido con una cinética de primer orden a una velocidad proporcional a la temperatura y recíproca con respecto al pH. Esto hace que la vida media en condiciones de eficiente extracción en medio ácido sea muy reducida. Sin embargo como la forma V en tales condiciones es más estable que la G, si el objetivo es obtener 6-amino penicilánico (6-APA) la producción de penicilina V es más aconsejable. La extracción de penicilina se puede realizar en una o más etapas sucesivas, con una acidificación del caldo filtrado con H2SO4 o H3PO4 al 10% P/V y con el agregado de un agente surfactante (0,003 - 0,1% P/P, en el solvente), realizándose la extracción y concentración en extractores centrífugos. Dependiendo de las especificaciones de uso final, el solvente conteniendo penicilina se puede tratar con carbón para separar pigmentos y otras impurezas. Esta etapa actualmente no se realiza debido a las bajas impurezas de los caldos y a los altos rendimientos obtenidos. La cristalización se puede realizar desde la fase acuosa si se desea, siendo los valores críticos las concentraciones de sodio o potasio, la temperatura, la concentración de penicilina y el pH. En caso de hacerse la cristalización a partir de un solvente se requiere también un exceso de Na+ o K+ , siendo los cristales recuperados en un filtro rotatorio a vacío. Estos cristales son lavados y presecados con un solvente volátil que también separa impurezas coloreadas. El secado definitivo se puede realizar con aire caliente, vacío o calor radiante. La penicilina cristalina G o V así obtenida puede ser empleada como tal o como intermediario que es convertido a 6-APA para obtener nuevas penicilinas semisintéticas, cuidando en todos los casos que los productos deberán tener un grado farmacéutico. El ácido 6-APA puede ser obtenido por vía enzimática (penicilinacilasa) o química; sin embargo todas estas etapas escapan al alcance de esta monografía, por lo tanto se remite al lector interesado a la bibliografía.
Se atribuye un 80% del costo de producción de penicilina al proceso de fermentación y un 20% a las etapas posteriores de extracción y purificación. A su vez en el proceso fermentativo, un elevado porcentaje en los costos corresponde al medio de cultivo, en el cual la glucosa es el componente de mayor valor. El máximo rendimiento mencionado en esta fermentación es aproximadamente 0.1 g de penicilina por gramo de azúcar. El balance de materia para glucosa es el siguiente:
donde Y'p/s es el rendimiento en producto que se obtendría cuando no hay crecimiento ni mantenimiento, y los demás términos tienen el significado ya mencionado. Se ha estimado que de la cantidad total de glucosa consumida, el 20% se utiliza en la formación dé biomasa, el 10% para la producción de penicilina, y el resto, o sea el 70% para mantenimiento. El valor de Y'p/s se puede estimar teóricamente mediante el conocimiento de la ruta biosintética que conduce al producto. En el caso de la penicilina el valor máximo teórico posible ha sido calculado en 1.1 g de penicilina g-1 de glucosa Tomando en cuenta el elevado consumo de glucosa para mantenimiento es evidente que deben realizarse todavía estudios fisiológicos con el objeto de reducir ese porcentaje. En 1980 la producción mundial de penicilina alcanzó las 17.000 toneladas con un valor estimativo de 380 millones de dólares. Estos dos valores son mayores que los de cualquier otro antibiótico y no son fijos sino que la producción tiene una significativa velocidad de crecimiento anual. Esto se debe a su baja toxicidad y la posibilidad de modificar químicamente la molécula, lo cual incrementa su utilidad. A pesar de los avances logrados, muchos problemas fundamentales sobre el control de la fermentación de penicilina permanecen todavía sin resolver. Las futuras mejoras en la producción deberían considerar: El aumento de qp max y la biomasa (X), la disminución de mc, la inhibición de la hidrólisis de la penicilina, la disminución de la viscosidad de los caldos y del porcentaje de carbono destinado a mantenimiento, la obtención de cepas con fenotipos y productividad estables, y finalmente el mejoramiento de los sistemas de operación como el batch alimentado y el continuo.
1. Comprehensive Biotechnology. The practice of Biotechnology: Current Commodity Products, Vol. 3. Ed. Harvey W, Blanch; Stephen Drew, Daniel C. Wang. Pergamon Press, 1985. 2. Microbial Growth. Benchmark Papers in Microbiology. Ed, P.S.S. Dawxon. Dowden, Hutchinson-Ross, Inc. Pennsylvania, 1974. 3. Microbial Technology. Microbial Processes. Second Edition/Volume I. Ed. H.J. Peppler and D. Perlman. Academic Press, N. Y., 1979. |
