Curso de
Microbiología General
de Enrique Iáñez
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24.
RECOMBINACIÓN Y RESTRICCION
ÍNDICE
1 INTRODUCCIÓN A LAS VARIACIONES POR CAMBIOS EN EL GENOTIPO ASOCIADAS
CON TRANSFERENCIA DE MATERIAL GENÉTICO *
2 RECOMBINACIÓN *
2.1 CONCEPTOS GENERALES *
2.2 RECOMBINACIÓN GENERAL U HOMÓLOGA *
2.3 RECOMBINACIÓN ESPECÍFICA DE SITIO CONSERVATIVA *
2.3.1 INTEGRACIÓN DEL GENOMIO DEL FAGO l EN EL CROMOSOMA
DE E. COLI *
2.3.2 INVERSIÓN DE SEGMENTOS DE ADN POR RECOMBINACIÓN ESPECÍFICA CONSERVATIVA *
2.4 RECOMBINACIÓN ESPECÍFICA "ILEGÍTIMA": PROPICIADA POR ELEMENTOS
GENÉTICOS TRANSPONIBLES *
2.4.1 CARACTERÍSTICAS GENERALES DE LOS ELEMENTOS GENÉTICOS MÓVILES Y DE LA
TRANSPOSICIÓN EN LAS BACTERIAS *
2.4.2 TIPOS DE ELEMENTOS GENÉTICOS TRANSPONIBLES EN BACTERIAS: *
2.4.3 CARACTERISTICAS GENERALES DE LA TRANSPOSICION: *
2.4.4 REGULACION DE LA TRANSPOSICION Y POSIBLE SIGNIFICADO EVOLUTIVO *
2.4.5 CONSECUENCIAS GENÉTICAS DE LA TRANSPOSICION *
2.4.6 EMPLEO DE TRANSPOSONES COMO HERRAMIENTAS EN ESTUDIOS GENÉTICOS *
3 SISTEMAS DE RESTRICCIÓN Y MODIFICACIÓN *
3.1 INTRODUCCION Y APROXIMACIÓN HISTÓRICA *
3.2 SISTEMAS M-R DE TIPO I. *
3.3 SISTEMAS M-R DE TIPO II *
BIBLIOGRAFIA *
BARRA DE EXPLORACIÓN: Microbiología General
[ Principal ] [ Arriba ] [ Concepto e historia de la Microbiología ] [ Los microorganismos en el mundo vivo ] [ La célula procariota ] [ Curso de Microbiología General ] [ Biosíntesis y crecimiento de la pared celular ] [ Membrana citoplasmática y transporte de nutrientes ] [ Inclusiones citoplasmáticas ] [ Cuerpos nucleares. El genóforo bacteriano ] [ Expresión genética y exportación de proteínas ] [ Flagelos, fimbrias, prostecas ] [ Endosporas y otras diferenciaciones ] [ Crecimiento y division celular ] [ Crecimiento de poblaciones bacterianas ] [ Metabolismo energético bacteriano ] [ Desinfectantes y antisépticos ] [ Quimioterápicos y antibióticos ] [ Resistencia bacteriana a los antibióticos ] [ Regulación genética en las bacterias ] [ Mutación y supresión en bacterias ] [ Recombinación ] [ Transformación ] [ Transducción ] [ Conjugación bacteriana ] [ BIBLIOGRAFÍA DE MICROBIOLOGÍA GENERAL ]
1.
INTRODUCCIÓN A LAS VARIACIONES POR CAMBIOS EN EL GENOTIPO
ASOCIADAS CON TRANSFERENCIA DE MATERIAL GENÉTICO
En la introducción al capítulo 23 ya
realizamos un encuadre general de los distintos tipos de variaciones genotípicas,
distinguiendo las que no implican transferencia de material genético (mutación y
curación) de las que derivan de transferencia de ADN entre bacterias. A partir de ahora
nos vamos a ocupar de estas últimas.
Rasgos generales de la transferencia genética en bacterias:
- La transferencia es unidireccional,
es decir, tiene una determinada polaridad, existiendo células donadoras y células
receptoras.
- La transferencia del genomio
de una célula a otra no suele ser total, sino parcial.
- Parte del material genético,
una vez introducido en la célula receptora, sufre inmediatamente un fenómeno de recombinación
con el genomio de la receptora. El resto del material de la donadora o no se replica, o se
ve destruido.
- Como se puede deducir, tras
los procesos de transferencia genética bacteriana, no surge una diploidía total (como es
el caso en eucariotas), sino una diploidía parcial, que recibe el nombre de merodiploidía.
Las células bacterianas diploides parciales reciben la denominación de merodiploides
o merozigotos. Además, la merodiploidía suele ser transitoria.
Este tipo de intercambio genético unidireccional, con diploidía
transitoria parcial, se denomina meromixia, para distinguirlo de la reproducción
sexual de eucariotas.
- El genomio de la célula
receptora se suele denominar endogenote.
- La porción de genomio de la
cél. donadora que se transfiere se llama exogenote.
Los procesos de transferencia genética en bacterias son de tres
grandes tipos, más una variante adicional de uno de ellos:
- TRANSFORMACIÓN: captación y
asimilación de ADN libre (desnudo), a partir del medio, por parte de una célula
receptora (lo estudiaremos en el cap. 25).
- TRANSDUCCIÓN: el material
genético es transportado desde la cél. donadora a la receptora por medio de un virus
bacteriano (o sea, un bacteriófago o simplemente, fago), que actúa como vector (ver cap. 26).
- CONJUGACIÓN: transferencia
directa de material genético, promovida por un plásmido, desde una célula donadora a
otra receptora, por medio de contactos íntimos entre ambas (puentes de unión). Una
variante de la conjugación es la SEXDUCCIÓN: en ella, un trozo definido de mat.
genético de la donadora es transferido como parte de un plásmido conjugativo (cap. 27).
Pero antes de abordar estos sistemas de transferencia genética, en
este capítulo vamos a considerar el destino posible del material genético
transferido por estos procesos. Dejando aparte la posibilidad de que el material
transferido sea por sí mismo un replicón, y por lo tanto, al llegar a la célula
receptora pueda replicarse y mantenerse por sí mismo, el exogenote puede sufrir dos
destinos muy distintos:
- Por un lado, puede verse
implicado en un tipo de proceso de recombinación genética, que lo "incorpora"
de alguna forma al endogenote (lo veremos en la primera parte del cap. 24).
- Por otro lado, el exogenote
puede ser "reconocido como extraño" por parte de la célula receptora, en cuyo
caso será destruido (parte2ª del cap. 24).
La recombinación es el proceso por el que la información genética se
ve redistribuida, tras la transferencia del exogenote al endogenote. La recombinación
permite "barajar" grandes conjuntos de genes, suministrando una fuente de
variación y selección para la evolución, más rápida que la mutación.
En bacterias encontramos los siguientes tipos principales de
recombinación:
- Recombinación general u homóloga
- Recombinación específica (no-homóloga), en la que a su vez distinguimos:
- Rec. específica legítima, conservativa;
- Rec. específica "ilegítima", propiciada por elementos genéticos
transponibles.
A continuación, y antes de abordar cada tipo de recombinación,
daremos las definiciones generales de cada uno de estos procesos recombinativos:
Recombinación general u homóloga
- Puede ocurrir en cualquier
lugar del genomio, por emparejamiento entre pares de secuencias que presenten una
homología suficientemente extensa.
- Depende de la intervención de
un equipo enzimático característico, en el que la proteína RecA (o equivalente) es
central en el proceso.
Recombinación específica legítima (conservativa)
- Requiere cortas secuencias de
homología entre el exogenote y el endogenote (por eso se llama también "específica
de sitio"), que son reconocidas por proteínas específicas.
- Es independiente de RecA.
- Este tipo de recombinación es
típica de la integración de genomios de fagos en sitios concretos del genomio de
bacterias hospedadoras.
Recombinación específica ilegítima: fenómenos de transposición
- No depende de homologías (ni
siquiera cortas) entre el exogenote (en este caso, un elemento genético transponible,
como IS o Tn) y el endogenote.
- También es independiente de
RecA.
- El elemento transponible
codifica una enzima (genéricamente se les denomina transposasas) que reconoce secuencias
específicas inversamente repetidas en los extremos del propio elemento, lo cual se
requiere para el proceso de transposición.
- Muchos elementos transponibles
(pero no todos) poseen un mecanismo replicativo de transposición: es decir, al
transponerse dejan una copia de sí mismos en el sitio original, y generan una copia nueva
en el sitio a donde se transponen (recombinación específica duplicativa).
2.2
RECOMBINACIÓN GENERAL U HOMÓLOGA
Anteriormente ya definimos sus características generales. A
continuación vamos a describir un modelo molecular de esta recombinación, basado en el
clásico de Meselson y Radding, modificado con los últimos avances. No se olvide que
estamos ante un modelo, es decir, una propuesta hipotética para explicar un
conjunto de datos experimentales. No todos los puntos de este modelo están totalmente
aclarados o demostrados:
Supongamos que tenemos un exogenote y un endogenote, ambos consistentes
en dobles hélices. En los modelos de recombinación, al exogenote se le suele denominar
como ADN donador, y al endogenote como ADN receptor.
- Iniciación de la recombinación
: La recombinación homóloga comienza con una
incisión endonucleotídica en una de las cadenas de la doble hélice donadora. La
responsable de este proceso es la nucleasa RecBCD (=nucleasa V), que actúa de la
siguiente manera: se une aleatoriamente al ADN del donador, y se va moviendo por la doble
hélice hasta que encuentra una secuencia característica denominada c
(letra griega "chi"), que es un "punto caliente recombinativo":
5' GCTGGTGG 3'
3' CGACCACC 5'
Una vez reconocida la secuencia, la nucleasa RecBCD corta a 4-6 bases a
la derecha (lado 3') de la cadena superior (tal como las hemos escrito arriba). Entonces,
esta misma proteína, actuando ahora como una helicasa, va desenrollando la cadena
cortada, haciendo que se desplace una zona de ADN de cadena sencilla (ADN c.s.) con su
extremo 3 libre
- El hueco que ha dejado la porción desplazada de la cadena cortada del donador es
rellenado mediante síntesis reparativa de ADN.
- La zona de cadena sencilla desplazada del ADN donador es recubierta por subunidades
de la proteína RecA (a razón de un monómero de RecA por cada 5-10 bases). De este
modo, esa cadena sencilla adopta una configuración helicoidal extendida.
- Asimilación o sinapsis:
Este es el momento clave de actuación de la RecA. De
alguna manera, la RecA unida al ADN c.s. del donador facilita el encuentro de éste con la
parte de doble hélice complementaria del receptor, de modo que en principio se forma una triple
hélice. A continuación, con la hidrólisis de ATP, la RecA facilita que la cadena
del donador desplace a la cadena homóloga del receptor, y por lo tanto se empareje con la
complementaria de ese receptor. En este proceso, la porción de cadena del receptor
homóloga del donador se ve desplazada, originándose la llamada "estructura en
D".
- Es importante resaltar que
este proceso propiciado por RecA depende de que el donador y el receptor presenten gran
homología de secuencia (del 100 al 95%), y de que estos segmentos de homología tengan
más de 100 bases de longitud.
- Observar que esta sinapsis
implica la formación de una porción de heterodúplex en la doble hélice
receptora: hay una zona en la que cada cadena procede de un ADN c.d. parental distinto
(donador y receptor).
- Se supone que la cadena recién desplazada del ADN receptor (estructura en D) es
digerida por nucleasas.
- Unión covalente de los extremos originados en las dos cadenas homólogas
. Esto da
como resultado un entrecruzamiento simple por el que las dos dobles hélices se
encuentran "atadas". La estructura global resultante se denomina estructura
de Holliday.
- Migración de las ramas:
al punto de cruce de la estructura de Holliday se une un
complejo formado por las proteínas RuvA y RuvB, que con hidrólisis de ATP logran el
desplazamiento del punto de cruce de Hollyday: de esta forma se va agrandando la porción
de heterodúplex en ambas dobles hélices.
- Isomerización
: para visualizarla fácilmente, imaginar que rotamos los dos
segmentos de uno de los ADN c.d. 180o respecto del punto de entrecruzamiento,
para generar una estructura plana que es isómera de la anterior ("estructura en
X").
- Resolución de esta estructura
: este paso está catalizado por la proteína RuvC,
que corta y empallama entre sí dos de las cadenas entrecruzadas en la juntura de
Hollyday. El resultado de la resolución puede variar según que se corten y empalmen las
cadenas que antes no participaron en el entrecruzamiento, o que vuelvan a ser éstas las
implicadas en esta segunda operación de corte y sellado:
- Si los cortes y empalmes afectan a las cadenas de ADN que antes no participaron en en el
entrecruzamiento, el resultado será dos moléculas recombinantes recíprocas,
donde cada una de las 4 cadenas son recombinantes (ha habido intercambio de marcadores
entre donador y receptor)
- Si los cortes y empalmes afectan a las mismas cadenas que ya habían participado en el
primer entrecruzamiento, el resultado consistirá en dos dobles hélices que presentan
solamente sendas porciones de ADN heterodúplex.
Este modelo, como dijimos es aplicable a bacterias. Sin embargo,
dejando aparte los aspectos enzimáticos (proteínas Rec y Ruv), los aspectos mecánicos
(principalmente los requerimientos de grandes zonas de homología, sinapsis, estructuras
de Holliday, formación de heterodúpex, etc.) son aplicables también a los organismos
superiores (quizá el alumno haya estudiado o estudiará un modelo parecido en la
asignatura de Genética). De todas formas, hay que volver a insistir en una notable
diferencia entre la recombinación homóloga de las bacterias y la de los organismos
superiores de reproducción sexual: en las bacterias la recombinación afecta a porciones
relativamente pequeñas del genoma donador, mientras que en los eucariotas cada cromosoma
completo se empareja con el homólogo (si bien sólo se producen unos pocos
entrecruzamientos).
2.3RECOMBINACIÓN ESPECÍFICA DE SITIO CONSERVATIVA
Caracteres generales:
- Es independiente de RecA (u
otras enzimas de rec. homóloga).
- Es independiente de grandes
regiones de homología entre exo- y endogenote.
- El proceso está catalizado
por enzimas específicas llamadas en general "recombinasas", que tienen un mecanismo
de acción similar al de las topoisomerasas de tipo I.
- No hay replicación de ADN
durante el evento de recombinación específica de sitio, por lo que también se la llama
"conservativa".
Estudiaremos dos ejemplos de esta clase de recombinación: el clásico
caso de la integración del genomio del fago l en un punto
concreto del cromosoma de E. coli, y la variación de fase flagelar por inversión
de un segmento de ADN de Salmonella typhimurium.
2.3.1
INTEGRACIÓN DEL GENOMIO DEL FAGO l EN
EL CROMOSOMA DE E. COLI
Introducción al concepto de fago moderado (avance de lo que veremos en
la sección de Virología):
- Ciclo lítico (vegetativo) y
ciclo lisogénico.
- En el estado lisogénico, el
ADN de l se integra en el cromosoma de E. coli, y
mantiene todas sus funciones líticas "desconectadas". En esta situación se le
llama profago, y se comporta como una porción "normal" del genomio de su
hopedador. Eventualmente, el profago puede inducirse, es decir, sus funciones líticas se
activan: el profago se escinde del cromosoma bacteriano, se circulariza y conecta todos
los genes cuya expresión conducirá a la producción de muchas partículas del virus, que
terminan lisando la célula, y liberándose para reiniciar el proceso.
- Observen las diferencias en el
mapa del ADN del fago: cuando se encuentra dentro de la partícula del virus (ADN c.d.
lineal: A.....attP....R), pero al entrar a la bacteria, se circulariza. Como profago
también es lineal, pero con un orden distinto al de la partícula del fago antes de la
infección (......A R........).
El paso del ADN del fago desde su forma circular (vegetativa) a la
forma de profago (ciclo lisogénico) se debe a un fenómeno de recombinación específica
de sitio, en el que están implicadas las secuencias attP (del fago) y attB
(de la bacteria). La zona attB está situada entre los operones gal y bio
del cromosoma de E. coli.
Cada una de las zonas att está compuesta de una secuencia
central (núcleo, "O"), de 15 p.b., y de dos regiones adyacentes, llamadas
brazos. Los núcleos de attP y de attB son exactamente idénticos,
mientras que los 4 brazos (los dos del fago, P y P', y los dos de la bacteria, B y B') son
diferentes del núcleo y diferentes entre sí.
El evento de integración se puede representar así:
Si atendemos a la nomenclatura a base de
núcleos y brazos, tenemos:
Este proceso requiere la actuación de dos tipos de proteínas:
- Int: la integrasa,
codificada por el gen int del fago l .
- IHF (=factor de
integración del hospedador), codificado por dos genes de la bacteria (himA, himD).
La escisión es, desde el punto de vista "mecánico", la
inversa de la reacción anterior para regenerar el ADN circular del fago, mediante la
recombinación específica:
attL X attR à attP + attB
(BOP' X POB' à POP' + BOB')
Ahora bien, para esta reacción hace falta, aparte de las proteínas
Int e IHF, una segunda proteína producida por l : proteína Xis
(llamada también escisionasa). La razón de una proteína adicional para revertir
el proceso de la integración cobra su sentido si pensamos en que la combinación de
brazos que rodea a los núcleos es distinta en la integración y en la escisión. La
proteína Xis confiere la "especificidad" para reconocer las secuencias attL
y attR. Por lo demás el proceso de escisión implica un mecanismo similar al de la
integración (que es lo que vamos a estudiar a continuación).
Aspectos moleculares de la integración del fago l
Se reconocen cortas secuencias de homología entre el ADN del fago y de
la bacteria: concretamente las zonas homólogas "O" tienen solamente 15 p.b.
Se producen cortes específicos en cada una de las cadenas, en
posiciones equivalentes, de modo que quedan extremos protuberantes 5' con 7
nucleótidos en cadena sencilla.
La reacción de la integrasa se parece a la de las topoisomerasas de
tipo I: rompe una cadena de ADN en cada uno de los sitios att, manteniendo fijos
los extremos recién cortados. La cadena intacta de cada sitio att pasa a través
del hueco abierto. A continuación, el extremo 3' de un sitio att es unido al
extremo 5' del otro sitio att. La operación que acabamos de describir se repite
con las otras cadenas que antes habían quedado intactas. Al igual que las topoisomerasas
de tipo I, la integrasa no requiere ATP, ya que la energía del enlace fosfodiéster
cortado se conserva en forma de enlace covalente entre el extremo recién cortado y la
propia enzima. Esta "energía" es la que luego se emplea en la operación de
empalme (creación de un nuevo enlace fosfodiéster).
El proceso que hemos descrito ocurre por medio de una gran partícula
formada por muchas unidades de Int y de IHF (unas 70 copias de IHF y de 20-40 de Int).
Esta partícula reconoce primero el sitio attP (del fago), siempre que el ADN
esté superenrollado negativamente. El ADN del fago de la zona attP se arrolla
alrededor de la partícula multiproteica, a la manera en la que se empaqueta el ADN en los
nucleosomas. Por esta razón, a esta partícula que lleva arrollado el ADN del fago se la
denomina intasoma. Una vez que el attP ha establecido los contactos específicos
con las proteínas Int e IHF del intasoma, éste "captura" a la secuencia attB
de la bacteria, haciendo que ambas att queden perfectamente alineadas para proceder
a la recombinación específica.
2.3.2
INVERSIÓN DE SEGMENTOS DE ADN POR RECOMBINACIÓN ESPECÍFICA
CONSERVATIVA
(Nota aclaratoria: lo que vamos a describir
a continuación es un proceso de recombinación específica dentro de un mismo
genomio. O sea, aquí no podemos hablar estrictamente de exogenote ni endogenote, ya que
no hay un fenómeno previo de transferencia de ADN. Sin embargo, lo estudiamos en esta
sección, ya que el mecanismo es del mismo tipo que el que acabamos de ver para la
integración del fago
l ). Además esta inversión sirve como mecanismo de adaptación al medio, ya que
permite la regulación de ciertos genes bajo determinadas condiciones.
Desde hace tiempo se venía observando que ciertas propiedades de
algunas bacterias cambian su fenotipo con una frecuencia varios órdenes de magnitud
superior a la tasa de mutación espontánea. Además, se da la circunstancia de que estos
cambios son también reversibles. Algunos ejemplos:
- antigenicidad flagelar;
- antigenicidad de pelos
(fimbrias adhesivas);
- adhesividad;
- virulencia de ciertas cepas
patógenas, etc.
Se ha visto que muchos de estos fenómenos de inestabilidad fenotípica
reversible se deben a un mecanismo de recombinación específica de sitio, por el que un
segmento definido de ADN cambia su orientación (o sea, se invierte respecto de su
polaridad anterior). Uno de los casos mejor estudiados es el de la transición de fase
flagelar en Salmonella typhimurium:
Dado un clon original homogéneo respecto del tipo de flagelina, al
cabo de poco tiempo de crecimiento, se puede observar que se han producido dos
subpoblaciones diferenciadas respecto del tipo de flagelina:
- subpoblación con flagelos a
base de flagelina H1;
- subpoblación con flagelos a
base de flagelina H2.
Cada flagelina se produce por un gen distinto.
La transición desde un tipo de flagelina al otro se da con alta
frecuencia (aprox. 10--3, frente a sólo 10--7 para la frecuencia de
mutación espontánea). Veamos cómo ocurre:
El segmento invertible contiene el gen hin (que deriva su nombre
de H-inversion), el cual codifica una recombinasa específica
("invertasa"), que reconoce los terminales inversamente repetidos (IR) de
14 pb que limitan a dicho segmento. El efecto de la enzima es aproximar entre sí a los
dos IR, para luego efectuar los cortes y empalmes específicos, actuando como una
topoisomerasa de tipo I.
Otros ejemplos de inversión específica de segmentos:
- En ciertos fagos existe un
segmento invertible de ADN, de modo que en cierta orientación el fago infecta a
determinadas especies y cepas bacterianas, mientras que la otra orientación le suministra
al fago la capacidad de infectar otras cepas e incluso especies distintas (ello se debe a
que en cada orientación el segmento induce la síntesis de tipos distintos de fibras para
adsorberse sobre distintas bacterias) . Por ejemplo, el fago Mu: posee el segmento
"G", invertible por el producto del gen gin; ello le permite cambiar de
bacteria hospedadora (puede cambiar de Escherichia coli a Citrobacter); el
fago P1: posee el segmento "C", invertible por el producto del gen cin.
Los genes hin, gin, cin y otros están relacionados evolutivamente entre sí y con
otros genes codificadores de recombinasas específicas, incluyendo las resolvasas de
algunos transposones (las resolvasas serán estudiadas en el apartado sobre los elementos
genéticos transponibles).
- La síntesis de fimbrias
adhesivas de ciertas cepas patógenas de Escherichia coli viene regulada por una
secuencia invertible.
Significado evolutivo del mecanismo de inversión específica de ADN:
- Permite cambios adaptativos
rápidos y reversibles ante posibles cambios rápidos en determinadas condiciones del
medio ambiente que son importantes dentro del nicho ecológico de la bacteria.
- Algunas bacterias patógenas
usan este sistema para escapar al sistema inmunitario del hospedador al que parasitan. Por
ejemplo, la variación de fase de fimbrias en Neisseria: en algunas especies
patógenas de este género (gonoco, p. ej.) existen varios genes de pilina, cada uno capaz
de codificar una pilina antigénicamente distinta de las demás. Cada clon de la bacteria
transcribe en cada momento solamente uno de estos genes, permaneciendo los demás
silenciosos. Pero con una elevada frecuencia (10--3) se producen
recombinaciones específicas entre una copia silenciosa y la versión que hasta el momento
estaba activa. Esto hace que a partir de ahora sea la nueva versión la que se exprese: da
origen a una nueva pilina, para la que el sistema inmune del hospedador no tiene
anticuerpos, lo que da una ventaja a la bacteria en su capacidad de patogenia.
2.4
RECOMBINACIÓN ESPECÍFICA "ILEGÍTIMA":
PROPICIADA POR ELEMENTOS GENÉTICOS TRANSPONIBLES
2.4.1
CARACTERÍSTICAS GENERALES DE LOS ELEMENTOS GENÉTICOS MÓVILES Y
DE LA TRANSPOSICIÓN EN LAS BACTERIAS
Los elementos genéticos transponibles "saltan" de un lugar a
otro de los genomas por un mecanismo de recombinación no homóloga
"ilegítima", es decir, que no depende de homologías entre el elemento y la
zona de genomio a la que este elemento va a transponerse (esta última se suele denominar
secuencia diana).
En general, las enzimas que catalizan ese proceso se denominan
transposasas. La transposasa corta el ADN "donador" en los extremos del elemento
transponible, y luego los inserta en el ADN diana, aunque los detalles varían entre las
distintas clases de elementos móviles. La mayor parte de los elementos transponibles
permanecen unidos durante el evento de transposición a ADN contiguo (es decir, nunca
llegar a estar "libres", sino permanecen ligados por alguna de sus cadenas al
ADN donador o al ADN diana).
Muchos elementos transponibles bacterianos tienen un mecanismo
replicativo: la transposición se realiza por un tipo especial de replicación del
elemento transponible, de modo que queda una copia del mismo en la posición original,
mientras otra copia se inserta en una nueva posición, bien sea del mismo replicón, bien
sea de otro replicón distinto del original y presente en la misma célula (p. ej., un
plásmido). Por ello se habla en estos casos de recombinación ilegítima duplicativa.
Pero también hay elementos transponibles que siguen un modelo no duplicativo, a veces
llamado de "cortar y pegar", porque el elemento se escinde de su localización
original y se inserta en una nueva.
Todos los elementos genéticos transponibles poseen terminales
inversamente repetidos (IR), es decir, la secuencia de un extremo en una cadena, leída en
sentido 5à 3 es idéntica (o casi) a la
secuencia del otro extremo de la otra cadena, también leída en su sentido 5à 3.
Un rasgo general de la transposición es que una vez acabada ésta, el
elemento móvil aparece "emparedado" entre copias directas de la secuencia
diana. Ello se debe a que la transposición implica la duplicación de dicha secuencia.
Las secuencias diana suelen ser de pocos pares de bases, y aunque dicha secuencia no suele
ser específica (varía de un evento a otro de transposición del mismo elemento), cada
elemento transponible suele conllevar la duplicación de secuencias de una longitud
determinada (algunos elementos tienen dianas de 4 pb., mientras otros las tienen de 9 pb,
etc.).
Aunque el lugar de la transposición no tiene especificidad de
secuencia diana, tampoco es un fenómeno aleatorio. Se sabe que algunos transposones
prefieren insertarse en sitios con determinadas propiedades de ADN, como grado de
superenrollamiento, de metalición, o susceptibilidad a la transcripción.
2.4.2
TIPOS DE ELEMENTOS GENÉTICOS TRANSPONIBLES EN BACTERIAS:
Secuencias de inserción (IS):
- Son elementos pequeños (del
orden de 1000 pb., o menos), dotadas en sus extremos de terminales inversamente repetidos
(IR), de unos 15 a 25 pb.
- Normalmente sólo poseen un
gen, que codifica la transposasa. Por lo tanto, a diferencia de los transposones, no
confieren fenotipo seleccionable.
- En los genomios de muchas
bacterias existen varias copias de cada tipo de IS. Por ejemplo, en Escherichia coli K12
existen unas 6 copias de IS1, 7 de IS2, etc. Los plásmidos, especialmente los
conjugativos suelen ser ricos en IS (un ejemplo de esto lo veremos en el tema 27, cuando
hablemos del plásmido F de E. coli).
- La frecuencia de
transposición varía según el tipo de IS, pero en general oscila entre 10--3
y 10--4 por división celular. La inserción de una IS en un gen concreto
ocurre a una frecuencia de 10--5 y 10--7, es decir, del orden de la
frecuencia de mutaciones espontáneas puntuales. La reversión de la inserción (por
escisión exacta de la IS) es menos frecuente: 10--6 a 10--10 por
generación.
Transposones (Tn):
Son elementos de mayor tamaño que los IS (desde casi 3.000 pb hasta
más de 20.000 pb). Poseen al menos un gen para la transposasa y un gen responsable de
alguna función no relacionada con la transposición: concretamente, muchos transposones
portan genes cuya expresión da fenotipos fácilmente seleccionables o detectables (p.
ej.: resistencia a antibióticos o a metales pesados). Estos genes marcadores son muy
útiles, ya que facilitan grandemente el estudio de estos transposones en laboratorio.
Dentro de los transposones bacterianos podemos distinguir dos subtipos
principales:
- Transposones compuestos, cuyos
extremos son dos secuencias de inserción idénticas o casi idénticas. Dentro de esta
clase, algunos poseen las dos copias de IS en la misma orientación, mientras que otros
las poseen en orientaciones opuestas; sin embargo, como a su vez las IS poseen cortos
terminales inversamente repetidos (IR), todos los transposones citados tienen este tipo de
secuencias IR. Se comportan como las respectivas IS, que son las responsables de la
transposición. Precisamente, la transposición depende de una o de ambas copias de la IS.
En su mecanismo de transposición pueden dar, como productos finales, cointegrados de
replicones y transposiciones. Ejemplos:
Tn10: formado por dos IS10 casi idénticas, que "emparedan" a
un gen de resistencia a la tetraciclina (TetR).
Tn5: dos copias casi idénticas de IS50 (de hecho, sólo difieren en un
nucleótido), que "emparedan" un gen de resistencia a kanamicina (KmR)
y un gen de resistencia a la estreptomicina (StrR).
Tn9: dos copias idénticas y en la misma orientación de la IS1,
enmarcando a un gen de resistencia a cloramfenicol (CmR).
- Transposones no compuestos:
carecen de IS, y sus extremos son dos cortas secuencias inversamente repetidas (IR).
Llevan en su porción central un gen para la transposasa, y a veces también un gen para
la resolvasa y/o para la regulación de la transposición. Suelen dar sólo
transposiciones, siendo los cointegrados únicamente una fase transitoria que actúan como
intermediarios del mecanismo de transposición. Los cointegrados se deshacen (se
"resuelven") por una resolvasa codificada por el mismo transposón. Existen
muchos ejemplos de este tipo, que se pueden agrupar en "familias" que presentan
un origen evolutivo común: Citaremos la denominada familia de TnA, que incluye Tn1 (AmpR),
Tn3 (AmpR), Tn1000, etc. Los miembros de una misma familia comparten el mismo
tipo de sistema de transposa/resolvasa, pero cada miembro puede contener genes de
resistencia (u otros) totalmente diferentes, que han debido de aquirir independientemente
a lo largo de la evolución. Una clave de cómo han podido adquirirlos la da una
categoría especial de transposones, llamada integrones.
Integrones (In):
Los integrones son un nuevo tipo de elementos transponibles dotados de
terminales inversamente repetidos (y a menudo con marcadores de resistencia a
antibióticos o a metales pesados) que se caracterizan por poseer un gen codificador de
una integrasa. Se transponen como una IS o un Tn, pero además, la integrasa les ha
capacitado evolutivamente para realizar una recombinación específica de sitio (al estilo
de la Int del fago l) por la que han incorporado a su
estructura algún gen procedente de otro elemento genético. Los integronenes pueden a su
vez formar parte de transposones mayores (p. ej., el Tn21 es un gran transposón
que codifica múltiples resistencias a antibióticos, y dentro de él se encuentra el
integrón In2, que contiene su propio gen int (integrasa), que se sitúa al
lado de un gen de resistencia a estreptomicina "capturado" (por recombinación
específica) de otro elemento genético (se ignora de dónde).
2.4.3
CARACTERISTICAS GENERALES DE LA TRANSPOSICION:
- Las transposasas reconocen los
terminales inversamente repetidos del transposón, y cortan en los extremos (en este
sentido se dice que la transposición es específica, pero sólo respecto de las
secuencias del elemento transponible).
- Por otro lado, las
transposasas cortan también en una secuencia diana más o menos aleatoria del sitio a
donde se van a transponer (inespecificidad respecto del "endogenote", por lo que
se llama a esta recombinación "ilegítima"). Los cortes son en ambas cadenas,
pero en situaciones ligeramente separadas entre sí en las dos cadenas. Posteriormente hay
empalmes entre las cadenas cortadas del Tn y de la diana.
- La transposición duplicativa
implica la replicación de la corta secuencia diana (dependiendo del transposón puede ser
de 4 hasta 12 pb.) y la replicación del propio transposón (por ello se habla de
recombinación ilegítima duplicativa).
- Al final de una transposición
duplicativa encontramos una copia del Tn en el sitio original, y otra copia en el sitio
receptor, limitada por sendas repeticiones directas de la corta secuencia diana (como
acabamos de decir, una de estas repeticiones surge por replicación durante el proceso de
la transposición).
Veamos un poco más en detalle el mecanismo de transposición de un
transposón típico, el Tn3
Breve descripción del Tn3: es un transposón de una 5 kb., cuyos
extremos son terminales inversamente repetidos de 38pb. Posee 3 genes, de los cuales dos
están implicados en la transposición:
- tnpA: codifica la
transposasa (enzima de recombinac. "ilegítima", propia de este Tn).
- tnpR: codifica la
resolvasa (enzima de tipo recombinasa específica de sitio-conservativa, parecida a las
que hemos estudiado en el apartado 2.3). Como veremos, la resolvasa actúa también como
reguladora de la transposición).
- bla: codifica una b -lactamasa (responsable del rasgo fenotípico AmpR de
resistencia a la ampicilina conferido por este transposón).
- Observar que, además, existe
una secuencia no codificadora, llamada res (=IRS), que como veremos, interviene
durante la fase de resolución de los cointegrados.
Modelo de transposición de Tn3: ocurre en dos etapas:
- Formación de un cointegrado
entre el replicón donador y el replicón receptor,
reacción que depende de la transposasa. En más detalle:
- la transposasa reconoce los terminales IR del Tn3, y realiza dos cortes, uno en cada
cadena, pero cada corte en un extremo distinto;
- la transposasa corta en el ADN diana, en cada cadena, en posiciones separadas por unos
pocos nucleótidos;
- cada extremo protuberante de la secuencia diana se une a un terminal cortado del Tn3.
Observar que en este momento tenemos una estructura en X, pero con "mellas" de
cadena sencilla a ambos lados del Tn, correspondientes cada zona de cadena sencilla a una
de las hebras de la corta secuencia diana.
- El extremo 3' que hay delante de cada mella sirve ahora como cebador para un proceso de
síntesis reparativa de ADN. Así pues, a partir de cada "mella" surge una
horquilla de replicación, que avanza hacia el interior del transposón, hasta llegar al
otro extremo. cuando cada onda replicativa llega hasta el extremo opuesto, se detiene, y
vuelve a intervenir una actividad ligasa que sella las cadenas.
- El resultado final es un cointegrado, en el que los dos replicones originales están
unidos a través de dos copias "directas" (en la misma orientación) del
transposón.
Resolución del cointegrado: la resolvasa específica del transposón reconoce las
dos secuencias res (una por cada copia del Tn3), y realiza una reacción de
recombinación específica conservativa, análoga a la reacción de escisión del fago l . El resultado de esta acción es que se regenera el replicón
donador, con una copia del Tn3, y aparece una nueva copia del Tn3 en el replicón
receptor, limitada por dos copias en la misma orientación de la secuencia diana. Observar
que cada copia del transposón es en realidad un "mosaico": debido al fenómeno
de resolución, cada cadena de cada copia consta de una porción de ADN de nueva
síntesis, generada en el paso de formación de cointegrado. Es decir, no existe una copia
"vieja" en el lugar original y una copia "nueva" en el nuevo, sino que
las dos copias tienen partes parentales y de nueva síntesis en cada cadena.
2.4.4
REGULACION DE LA TRANSPOSICION Y POSIBLE SIGNIFICADO EVOLUTIVO
Muchos transposones, una vez que se han integrado en un replicón, no
pueden insertarse de nuevo en ese mismo replicón, sino que han de hacerlo en otra
molécula de ADN. Esto se debe a que poseen mecanismos que impiden que el elemento
transponible sature de inserciones una misma molécula de ADN. Ejemplos:
- la proteína codificada por el
gen tnpR del Tn3, además de actuar como resolvasa, interviene como represor del
gen tnpA (que codifica la resolvasa), y de su propio gen.
- Algunos transposones, como
Tn10, sólo se transponen inmediantamente después de que haya pasado por ellos la
horquilla de replicación. En esta situación transitoria, el ADN del elemento se
encuentra hemimetilado, y al parecer es esta condición la que activa el promotor de su
transposasa así como a sus terminales.
En general, los transposones se pueden considerar como ejemplos de lo
que se ha dado en llamar "ADN egoísta": porciones de material genético cuyo
aparente único "objetivo" es perpetuarse en la célula por medio de su
capacidad de crear copias transponibles de sí mismo, aunque no estén sometidos a
presión selectiva directa por parte del medio ambiente. Sin embargo, si los
transposones fueran demasiado egoístas, podrían llegar a "saturar" de
sus copias al genomio "hospedador", llegando a inactivarlo. Parece ser que la
evolución ha llegado a una especie de "solución de compromiso" entre la
tendencia del transposón de "moverse" ilimitadamente (lo cual provocaría
inactivación insercional de numerosos genes), y la necesidad de conservar la integridad
de las funciones de la bacteria. Esto se traduce precisamente en la existencia de
distintos mecanismos que limitan el número de inserciones de un mismo elemento
transponible dentro de un determinado replicón.
2.4.5
CONSECUENCIAS GENÉTICAS DE LA TRANSPOSICION
Los transposones y secuencias de inserción causan una amplia gama de
alteraciones genéticas que pueden a su vez ser fuente de variabilidad genética sobre la
que pueden actuar las fuerzas selectivas del ambiente, para "alimentar" los
procesos evolutivos.
Veamos algunas de las alteraciones genéticas propiciadas por elementos
genéticos móviles:
- La más obvia e inmediata es la inactivación insercional de un gen donde se
hayan transpuesto: rompen la continuidad del gen, generando mutaciones que inactivan la
función de dicho gen. Si el gen forma parte de un operón policistrónico, la mutación
tiene efectos polares sobre la transcripción de los genes distales del operón, debido a
que el elemento transponible suministra de zonas susceptibles de generar horquillas en el
ARNm que actúan como terminadores de transcripción dependientes de r.
La inserción de un elemento transponible en un gen u otra zona de material genético se
representa indicando el nombre del transposón, seguido de ::, y finalizando con el nombre
del gen o de la zona de ADN. Ejemplo, si una copia de IS1 se ha insertado en el gen lacZ,
esto se representa como IS1::lacZ.
- Algunas secuencias IS (p. ej., IS2, IS3), y algunos transposones (como Tn5 y Tn10) en
una de sus orientaciones, pueden activar la expresión de genes adyacentes al sitio de
integración. Esto se debe a que estos elementos transponibles poseen potentes promotores
que propician transcripción "hacia fuera" respecto del propio elemento.
- Algunos transposones e IS sufren escisiones anómalas que "arrastran" consigo
material genético adyacente: esto provoca grandes delecciones en los replicones
donde previamente se habían insertado.
- Los Tn e IS pueden actuar como regiones portátiles de homología:
- por ejemplo, dos transposones idénticos, situados en lugares diferentes del cromosoma,
pueden recombinarse por medio de la enzima RecA de la recombinación general, dando
lugar a inversiones del material intercalado (situado entre los dos elementos).
- Otro caso: dos transposones idénticos, cada uno situado en un replicón distinto,
pueden recombinarse por RecA, dando fusión de replicones. Precisamente esta es la
base de la producción de cepas Hfr a partir de las cepas F+: como veremos en
el tema de conjugación, tanto el plásmido F como el cromosoma poseen copias de
determinadas IS; dichas copias son reconocidas con cierta frecuencia por el sistema de
recombinación homóloga, que las recombina (recombinación con un solo crossing-over), lo
cual lleva a la fusión del plásmido F con el cromosoma bacteriano.
- Producción evolutiva de transposones complejos a partir de IS o de transposones más
sencillos
. Imaginen un gen que codifique una resistencia a algún antibiótico;
supongamos que un determinado IS se inserta en las cercanías de este gen. Pasado el
tiempo, puede ocurrir que otra copia de esa secuencia IS se inserte cerca de ese gen, pero
por el otro flanco. Observen que ahora tenemos un transposón compuesto (de los que tienen
extremos que son IS). Este nuevo transposón se comporta como una unidad, usando las
funciones de transposición de uno de los IS. Esta es precisamente una de las bases
genéticas que explican la aparición y diseminación de cepas bacterianas resistentes a
antibióticos: desde que el hombre inauguró la era de los quimioterápicos a mediados de
este siglo, estamos asistiendo a un auténtico proceso de evolución rápida de
transposones complejos, algunos de los cuales portan varios genes de resistencia (frente a
varios antibióticos). Los transposones pueden "pasar" a gran variedad de
replicones, incluyendo plásmidos conjugativos, que van diseminando al transposón por
gran variedad de cepas bacterianas, incluidas patógenas. Como se puede imaginar, esto
constituye un problema de primer orden, ya que puede limitar e incluso impedir una
adecuada terapia por antibióticos en numerosas infecciones bacterianas. En el tema 27
hablaremos más sobre los plásmidos de resistencia (plásmidos R) y sobre su carácter
"modular", es decir, el hecho de que en buena parte están
"cosntruidos" a base de módulos o "cassettes" formados por
transposones, IS, transposones anidados (un transposón dentro de otro), etc.
2.4.6
EMPLEO DE TRANSPOSONES COMO HERRAMIENTAS EN ESTUDIOS GENÉTICOS
Para finalizar este apartado sobre los elementos genéticos móviles,
diremos que los transposones bacterianos se han convertido en poderosas herramientas para
el análisis genético y para la manipulación genética. Por ejemplo:
- Para realizar mutagénesis
por inserción. El seguimiento, búsqueda y estudio de los mutantes generados por
transposones que portan genes de resistencia a algún antibiótico es muy fácil y
cómodo, ya que la inactivación insercional de un gen va acompañada de la aparición del
fenotipo de resistencia al antibiótico codificado por el transposón (es decir, los
transposones actúan como "marcadores" genéticos portátiles fáciles de
seguir.
- Los elementos genéticos
móviles se pueden emplear como regiones portátiles de homología, que pueden
facilitar determinadas transferencias conjugativas.
- Se pueden crear genotecas
(bibliotecas de genes) derivadas por transposición aleatoria de un Tn a distintos
lugares de un genomio.
- Con determinados Tn se pueden
generar frecuentes delecciones.
Pero además, la conjunción del empleo de transposones portados por
plásmidos o por fagos, junto con las técnicas de Ingeniería Genética in vitro,
y otras técnicas de manipulación genética, constituyen un arsenal muy poderoso que
está haciendo avanzar de forma espectacular nuestros conocimientos de las bacterias y
nuestro potencial de "diseñar" de forma preconcebida nuevas combinaciones
genéticas (genes híbridos artificiales, "creación" de nuevas rutas
metabólicas no existentes en la naturaleza, etc...)
3.1
INTRODUCCION Y APROXIMACIÓN HISTÓRICA
En la introducción a este capítulo ya aludimos a los varios destinos
que puede experimentar el material genético del exogenote una vez que entra al
endogenote:
- si el exogenote es un
replicón funcional (que posee un origen de replicación capaz de ser reconocido por la
maquinaria replicativa de la célula receptora), este exogenote permanece como tal
replicón en estado autónomo (por ejemplo, plásmidos).
- El exogenote puede
recombinarse con el endogote, mediante algunos de los procesos recombinativos descritos en
la 10 parte de este tema.
- Pero el exogenote puede sufrir
otra alternativa: puede ser reconocido como "extraño" por parte de la
célula hospedadora, por medio de un fenómeno enzimático llamado restricción,
que conduce a la destrucción de este exogenote. Este va a ser el objeto de estudio de
esta 2ª parte del tema 24.
La restricción es un sistema que poseen muchas cepas bacterianas, y
representa una especie de "barrera" frente a la permanencia de ADN extraño que
hubiera podido entrar por alguno de los sistemas que estudiaremos en los capítulos
siguientes. De esta forma, las bacterias evitan la "promiscuidad" en los
intercambios genéticos. El posible significado adaptativo de este tipo de sistemas es el
de conferir "inmunidad" frente a exogenotes (por ejemplo, fagos) que pudieran
poner en peligro la individualidad genética e incluso la superviviencia de la bacteria en
cuestión.
La restricción va asociada a un sistema "paralelo" de
salvaguardia del ADN de la bacteria frente al propio sistema de restricción. Este sistema
de protección del ADN propio se denomina modificación, y mediante él, el ADN
queda "marcado" químicamente por metilación de determinadas secuencias.
La restricción y modificación fue descubierta en 1968, a resultas de
una serie de estudios sobre la infección del fago l en dos
cepas diferentes de Escherichia coli (las llamadas cepas "K12" y
"B"):
Observar que los fagos obtenidos por infección en cada una de
las cepas están "restringidos" a crecer en el mismo tipo de cepa del cual
proceden.
Ahora bien, como se puede ver, cuando se intenta infectar una cepa con
fagos obtenidos a partir de la otra cepa, la restricción no es total: siempre hay un
pequeño porcentaje (del orden de 1 en 10 000) de fagos que "escapan", y que
después de esto pueden crecer en la otra cepa con eficiencia de 100%. Explicación:
- Cada cepa posee una actividad endonucleasa
que reconoce como extraño al ADN del fago crecido en la otra, y lo destruye. A este tipo
de endonucleasas se las denomina endonucleasas de restricción, o más
abreviadamente, restrictasas.
- Con baja frecuencia, el ADN de
un fago puede "escapar" a la restricción de la cepa opuesta a donde ha crecido.
Una vez que ha escapado, este ADN es reconocido como "propio" por parte de esta
cepa, de modo que este fago podrá crecer con total eficiencia (100%) en dicha cepa. La
razón es que el ADN es modificado químicamente por el hospedador, de modo que queda
protegido de la correspondiente restrictasa de esa misma cepa. La modificación
química consiste en la introducción de grupos metilo (CH3-) en
determinadas bases dentro de determinadas secuencias del ADN, lo cual está catalizado por
una metilasa específica.
Se han descrito varios tipos distintos de sistemas de
modificación-restricción (M-R), según sus mecanismos de acción generales, pero
nosotros sólo trataremos los dos mejor concocidos: M-R tipo I, tipo II.
Fueron los primeros en ser descritos. Precisamente el ejemplo típico
lo constituye el caso al que acabamos de hacer referencia en la página anterior. La cepa
K12 de E. coli posee el sistema llamado EcoK, y la cepa B posee el llamado EcoB.
Lo característico de los sistemas M-R de tipo I es que las actividades de modificacación
y las de restricción están producidas por un complejo multiproteico (multimérico),
que realiza los dos tipos de actividades. Ejemplo: Complejo de EcoK
posee 2 subunidades R (con actividad nucleasa de restricción), 2 subunidades M (con
actividad de metilación)y 1 subunidad S (confiere especificidad de reconocimiento de
secuencia al complejo).
- Reconocen secuencias
relativamente grandes, que no presentan simetrías.
- La actividad endonucleasa (de
las subunidades R) no corta dentro de la secuencia reconocida, sino lejos de ella,
a distancias variables (del orden de unos 1000 pb., y en lugares inespecíficos.
- Por otro lado, la actividad
nucleasa va acompañada de hidrólisis de ATP
- La actividad metilasa del
complejo hace uso de S-adenosil-metionina (SAM) como donador de los grupos metilo.
Veamos en más detalle el comportamiento del complejo del complejo EcoB.
Observen que el complejo se comporta de modo diferente según que actúe sobre ADN de tipo
parental previamente metilado en ambos cadenas, o de que actúe sobre ADN hemimetilado
(situación que se produce inmediatamente después de la replicación), o sobre ADN no
metilado en la secuencia-diana (que sería reconocido como "extraño"):
- sobre ADN metilado: es
reconocido como "propio" (merced a la subunidad S); no sufre ninguna reacción
por parte de EcoB.
- sobre ADN hemimetilado:
las subunidades M metilan la cadena no metilada (cadena hija de nueva síntesis).
- sobre ADN no metilado:
es reconocido como "extraño". Interviene la actividad restrictasa, con
hidrólisis de ATP. El ADN es destruido.
Observen las diferencias con respecto a los de tipo I:
- Las actividades metilasa y
restrictasa están en proteínas distintas que no forman complejos multifuncionales.
- No requieren ATP. Sólo
necesitan iones Mg++ para funcionar. La metilasa, además, usa SAM como donador
de metilos.
- Cada miembro de la pareja de
modificación y restricción reconoce la misma secuencia específica de ADN.
- La secuencia reconocida
consiste siempre en un corto número de pares de bases. Típicamente consta de 4 o 6 p.b.
que constituyen una secuencia palindrómica o con una simetría patente.
- La metilasa suele ser
una proteína monomérica, que introduce grupos metilo en una A o en una G (según la
metilasa en cuestión), en ambas cadenas, dentro de la secuencia reconocida.
- La restrictasa suele
ser una proteína formada por dos subunidades del mismo tipo, ensambladas simétricamente.
Muchas restrictasas cortan dentro de la secuencia, dejando extremos protuberantes
mutuamente cohesivos, o extremos romos (según la restrictasa en cuestión). Algunas
restrictasas dejan extremos protuberantes 5', mientras que otras dejan extremos
protuberantes 3'.
El mecanismo general de las restrictasas de tipo II es más sencillo
que las de tipo I: cada subunidad del dímero reconoce la misma secuencia, presente en
cada una de las partes especulares del palíndromo, y realiza un corte en un lugar
específico, que obviamente tiene su correspondiente en la otra cadena de la otra mitad
del palíndromo.
Existen cientos de restrictasas de tipo II (y se están descubriendo
continuamente). Más de la tercera parte de las cepas bacterianas presentan al menos un
sistema M-R de tipo II. Muchas de ellas son codificadas a partir de genes situados en
plásmidos.
Se habla de isosquizómeros para referirse a aquellas
restrictasas que, siendo diferentes y procediendo de especies distintas, reconocen y
cortan la misma secuencia, dejando el mismo tipo de extremos.
No hace falta insistir en la importancia práctica de las restrictas de
tipo II, como herramientas básicas -junto con la ADN ligasa- en la Ingeniería Genética.
El biólogo cuenta con un impresionante "arsenal" -comercializado- de enzimas
(no sólo las que acabamos de citar) para manipular a placer el ADN de cualquier ser
vivo...(pero esta es ya otra historia, que el alumno interesado irá conociendo en esta y
en otras asignaturas).
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LIBROS DE TEXTO Y DE
CONSULTA
JIMÉNEZ SANCHEZ, A., JIMÉNEZ MARTÍNEZ, J (1998): "Genética
microbiana". Ed. Síntesis.Madrid.
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Washington DC: American Association for Microbiology. Para la recombinación homóloga,
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SUZUKI Y OTROS: Genética (5ª edición)
(Interamericana-McGraw Hill, Madrid, 1996). Para la recombinación homóloga y la
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ARTÍCULOS DE DIVULGACIÓN
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actualizado el 21 de enero de 1999
Ó 1998 ENRIQUE IAÑEZ PAREJA. Prohibida su reproducción,
salvo con fines educativos. Escríbame a eianez@goliat.ugr.es